การกำหนดความมีชีวิต สัณฐานวิทยา และฟีโนไทป์สำหรับการบำบัดด้วยสเต็มเซลล์

เซลล์ต้นกำเนิดมีเซนไคม์เป็นส่วนย่อยของสเต็มเซลล์ที่มีพลูริโพเทนต์ซึ่งสามารถแยกออกจากเซลล์มีโซเดิร์มได้ด้วยการต่ออายุการจำลองตัวเองและลักษณะการสร้างความแตกต่างหลายทิศทาง พวกมันมีศักยภาพสูงสำหรับการรักษาที่หลากหลายในการแพทย์เซลล์ต้นกำเนิดจากเยื่อหุ้มเซลล์มีฟีโนไทป์ภูมิคุ้มกันที่เป็นเอกลักษณ์และความสามารถในการควบคุมภูมิคุ้มกันดังนั้นเซลล์ต้นกำเนิดจากเยื่อหุ้มเซลล์จึงถูกนำมาใช้กันอย่างแพร่หลายในการปลูกถ่ายสเต็มเซลล์ วิศวกรรมเนื้อเยื่อ และการปลูกถ่ายอวัยวะนอกเหนือจากการใช้งานเหล่านี้แล้ว พวกมันยังถูกใช้เป็นเครื่องมือในอุดมคติในด้านวิศวกรรมเนื้อเยื่อในฐานะเซลล์เพาะเลี้ยงในชุดของการทดลองวิจัยพื้นฐานและการวิจัยทางคลินิก

Countstar Rigel สามารถตรวจสอบความเข้มข้น ความมีชีวิต การวิเคราะห์การตายของเซลล์และลักษณะฟีโนไทป์ (และการเปลี่ยนแปลงของพวกมัน) ในระหว่างการผลิตและการสร้างความแตกต่างของเซลล์ต้นกำเนิดเหล่านี้นอกจากนี้ Countstar Rigel ยังมีข้อได้เปรียบในการรับข้อมูลเพิ่มเติมเกี่ยวกับลักษณะทางสัณฐานวิทยา ซึ่งได้มาจากช่องแสงถาวรและการบันทึกภาพโดยใช้แสงเรืองแสงในระหว่างกระบวนการตรวจสอบคุณภาพเซลล์ทั้งหมดCountstar Rigel นำเสนอวิธีการที่รวดเร็ว ซับซ้อน และเชื่อถือได้สำหรับการควบคุมคุณภาพของสเต็มเซลล์

การตรวจสอบความมีชีวิตของ MSCs ในเวชศาสตร์ฟื้นฟู

รูปที่ 1 การตรวจสอบความมีชีวิตและจำนวนเซลล์ของเซลล์ต้นกำเนิดจากเยื่อหุ้มเซลล์ (MSCs) สำหรับใช้ในการรักษาเซลล์

เซลล์ต้นกำเนิดเป็นหนึ่งในวิธีการรักษาที่มีแนวโน้มมากที่สุดในการรักษาเซลล์สร้างใหม่ตั้งแต่การเก็บเกี่ยว MSC ไปจนถึงการบำบัด การรักษาความอยู่รอดของเซลล์ต้นกำเนิดในระดับสูงไว้ได้ในระหว่างขั้นตอนทั้งหมดของการผลิตเซลล์ต้นกำเนิด (รูปที่ 1) เป็นสิ่งสำคัญเครื่องนับเซลล์ต้นกำเนิดของ Countstar จะตรวจสอบความมีชีวิตและความเข้มข้นของสเต็มเซลล์เพื่อมีบทบาทสำคัญในการควบคุมคุณภาพ

การตรวจสอบการเปลี่ยนแปลงทางสัณฐานวิทยาของ MSC หลังการขนส่ง

เส้นผ่านศูนย์กลางและการรวมตัวถูกกำหนดโดย Countstar Rigel ด้วยเส้นผ่านศูนย์กลางของ AdMSC เปลี่ยนไปอย่างมากหลังการขนส่งเมื่อเปรียบเทียบกับก่อนการขนส่งเส้นผ่านศูนย์กลางก่อนการขนส่งคือ 19µm แต่เพิ่มขึ้นเป็น 21µm หลังการขนส่งจำนวนรวมของก่อนการขนส่งคือ 20% แต่เพิ่มขึ้นเป็น 25% หลังการขนส่งจากภาพที่ถ่ายโดย Countstar Rigel ฟีโนไทป์ของ AdMSC เปลี่ยนไปอย่างมากหลังการขนส่งผลลัพธ์ถูกแสดงในรูปที่ 3

การระบุ AdMSC ในเซลล์ฟีโนไทป์

ปัจจุบัน ขั้นตอนการทดสอบการระบุมาตรฐานขั้นต่ำสำหรับการประกันคุณภาพของ MSCs ที่ได้รับการตรวจสอบมีการระบุไว้ในแถลงการณ์ของ International Society for Cellular Therapy (ISCT) ซึ่งกำหนดไว้แล้วในปี 2006

การตรวจหา Apoptosis อย่างรวดเร็วใน MSC ด้วยบทนำ FITC Conjugated Annexin-V และ 7-ADD

สามารถตรวจพบการตายของเซลล์ด้วย FITC conjugated annexin-V และ 7-ADDPS มักพบในแผ่นพับภายในเซลล์ของเมมเบรนในพลาสมาในเซลล์ปกติ แต่ในช่วงการตายของเซลล์แบบอะพอพโทซิสในระยะเริ่มต้น ความไม่สมดุลของเมมเบรนจะหายไปและ PS จะเคลื่อนไปยังแผ่นพับภายนอก

รูปที่ 6 การตรวจหา Apoptosis ใน MSCs โดย Countstar Rigel

ก. การตรวจสอบด้วยสายตาของภาพเรืองแสงของการตรวจหาการตายของเซลล์ใน MSCs
B. แผนผังการกระจายของอะพอพโทซิสใน MSCs โดย FCS express
C. เปอร์เซ็นต์ของประชากรเซลล์โดยพิจารณาจาก % ปกติ, % อะพอพโทติก และ % เซลล์ตายแบบตาย/ระยะสุดท้ายมาก